诸如微球和类器官等3D体外模型为研究人员提供了比传统2D细胞培养模型更具生理相关性的微环境。然而,创建用于测量类器官反应的有效工作流程可能颇具挑战性。
在本研究中,我们利用cellSens软件的宏功能为无标记类器官数据制作批处理图像分析工作流程。之后我们将结果与CellTiter-Glo 3D细胞活力分析进行比较,以评估分析速度并确定对象检测和测量的准确性和灵敏性。
在Costar 96孔板中培养取自结肠癌患者的类器官。对其中一些孔使用星形孢菌素(ST)进行处理,以比较类器官对处理的反应。
在奥林巴斯FV3000共聚焦激光扫描显微镜的透射光检测器中对类器官进行成像。使用远红外激光(640 nm)和4倍物镜生成透射光通道图像。由于类器官位于不同的Z位置,因此使用Z-stack采集图像。步进长度为5 μm。
使用cellSens宏功能执行图像分析仅需两步:记录宏以及运行批处理分析。
在宏管理器中,可以将多个步骤记录为一组命令。在本分析中,我们记录了以下命令:
图1:作为宏过程记录的cellSens图像分析步骤
利用宏功能中的批处理运行模式,我们可以对指定文件夹内的多个图像运行所记录的宏。分析结果自动导出为电子表格。
图2:利用所记录宏过程进行批处理分析的步骤
为每个测量日准备单独的96孔类器官板。将CellTiter-Glo 3D试剂添加到每个孔内,并使用多孔板读板机测量细胞活力信号(ATP水平)。
在未经处理的类器官培养物中,类器官尺寸相关参数(面积、周长和半径)随时间增加。0.1μMST处理诱导细胞和类器官死亡。类器官的生长受到完全抑制,经ST处理的类器官中类器官的尺寸没有明显增加。
图3:对照:n = 3700.1μMST:n = 234。未经处理和经0.1μM ST处理的类器官,其尺寸相关参数随时间的变化。
测量了类器官态形态相关参数(形状因子和球形度)。在经ST处理的类器官中,形状因子值较高,表明这些类器官具有更圆的形状。未经处理类器官的形状因子值较低,表明这些类器官具有更不对称且分支的形状。未经处理和经ST处理的类器官的球形度值没有显著变化。
图4:类器官形态相关参数随时间变化的测量值
利用CellTiter-Glo 3D和成像方法均可测量类器官的生长。使用cellSens分析(面积)可以更早地显示类器官生长的差异。由于成像方法随时间变化始终使用同一孔板,因此在cellSens量化分析中每个数据点的变化均较小。细胞活力测量是一种终点测定,其在各时间点使用不同的孔板,因此增加了变异性。
图5:细胞活力测定与基于成像cellSens分析的比较
借助cellSens软件的宏功能,我们可以使用无标记数据建立快速成像和2D批处理图像分析过程。cellSens软件对象检测和测量的准确性和灵敏度高于CellTiter-Glo 3D细胞活力测定。此外,与从CellTiter-Glo读取单个参数的方式相比,cellSens还可利用图像数据执行多参数分析。另外我们还确认了,进行该分析无需熟悉宏编程语言,只需点击鼠标即可轻松完成。
Seungil Kim, Brandon Choi,南加州大学洛杉矶分校劳伦斯·J·埃里森转化医学研究所,
Shohei Imamura,奥林巴斯美国公司
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